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    真菌毒素檢測(cè)技術(shù)與產(chǎn)品服務(wù)(3)

    發(fā)布時(shí)間: 2009/3/27  點(diǎn)擊次數(shù): 2511次
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    相關(guān)產(chǎn)品:
    詳細(xì)介紹:

     液相色譜法測(cè)定谷物中黃曲霉毒素B1、G1B2、G2含量

        
        
    用一種快速方便的真菌毒素多功能凈化柱處理樣品,然后用液相色譜對(duì)谷物中黃曲霉毒素B1、G1、B2G2進(jìn)行測(cè)定。樣品經(jīng)乙腈-體積比8416)提取,提取液通過(guò)真菌毒素多功能凈化柱凈化、濃縮,三氟乙酸(TFA)柱前衍生,C18色譜柱分離,熒光檢測(cè)器檢測(cè),外標(biāo)法定量。對(duì)添加兩個(gè)濃度黃曲霉毒素的玉米樣品進(jìn)行加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn),4種毒素的回收率均在90.44%101.23%之間,B1、G1、B2、G2的zui低檢測(cè)限分別為2.01.0、0.50.5ng/kg。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,此法不僅定量準(zhǔn)確,精密度高而且操作極為方便。
         
    真菌毒素對(duì)糧食飼料的污染是一個(gè)性的問(wèn)題,我國(guó)因是農(nóng)業(yè)大國(guó)和人民以谷物為主食的飲食習(xí)慣,使真菌毒素的污染問(wèn)題顯得更為突出。黃曲霉毒素是真菌毒素的重要代表之一,對(duì)世界上30多個(gè)國(guó)家和地區(qū)進(jìn)行的調(diào)查表明,危害程度排在*位的是黃曲霉毒素。它是由黃曲霉、寄生曲霉和集峰曲霉產(chǎn)生的一組結(jié)構(gòu)類似的化合物[1],均為二呋喃香豆素(difuranocoumarin)的衍生物。雖然黃典霉毒素(AF)的衍生物有20多種,目前已分離鑒定出的AF包括:AFB1、AFB2AFG1、AFG2、AFM1、AFM2、AFP1、AFQ、AFH1AFGMAFB2a和毒醇等12種,但天然污染糧油食品的AFB組和G組兩大類,即AFB1、AFB2、AFG1AFG2。黃曲霉毒素的毒性,致突變及致癌作用已得到明確證實(shí)。它由強(qiáng)到弱的順序依次為AFB1> AFG1>AFM1>AFB2>AFG2[2]。歐盟的黃曲霉毒素的*AFB14μg/kg。
       
    霉菌毒素的檢測(cè)定量一直是個(gè)難點(diǎn),目前黃曲霉毒素檢測(cè)的國(guó)標(biāo)方法有薄層色譜法、酶聯(lián)免疫法、免疫親和柱凈化液相色譜法。薄層色譜法操作繁瑣、污染大、定量差、耗時(shí)長(zhǎng);而酶聯(lián)免疫法雖操作簡(jiǎn)單、靈敏度高,但特異性差;免疫親和柱液相色譜法是柱后衍生法,它對(duì)于高黃曲霉毒素含量的樣品偏差較大。且柱后衍生不普及,給使用帶來(lái)不便。本文所述方法用真菌毒素多功能凈化柱快速凈化,液相柱前衍生法簡(jiǎn)單方便,靈敏度和特異性高,又能避免氯仿等有毒試劑的使用,是一種值得推廣的好方法。這種方法,在上不少試驗(yàn)室已得到確認(rèn),還被作為AOAC的*方法。
    1
    材料與方法
    1.1
    試劑和儀器
       
    乙腈(色譜純)、甲醇(色譜純)、*(分析純)、去離子水、PuriToxSR160真菌毒素多功能凈化柱、液相色譜儀、2475熒光檢測(cè)器。
    1.2
    標(biāo)準(zhǔn)品的準(zhǔn)備
       
    標(biāo)準(zhǔn)品包括了黃曲霉毒素B1G1、B2、G2各單一標(biāo)準(zhǔn)液和混合標(biāo)準(zhǔn)液,溶劑為乙腈,黃曲霉素混合標(biāo)準(zhǔn)液的濃度為2μg/ml B1、G1以及0.5μg/ml B2G2。單一標(biāo)準(zhǔn)液用來(lái)確定各自的保留時(shí)間,具體工作用混合標(biāo)準(zhǔn)液是將所提供標(biāo)準(zhǔn)液稀釋10倍,用微量注射器分別取5.0、10.0、20.0、25.0、40.050.0μl稀釋標(biāo)準(zhǔn)液具體濃度為200ng/mlB1、G1;50ng/mlB2、G2),和樣品一樣蒸干,用三氟乙酸衍生,定容于0.2ml流動(dòng)相,故所得進(jìn)針的濃度分別是:B1G15.0、10.0、20.0、25.0、40.0、50.0ng/ml;G2、B21.252.5、5.06.25、10.012.5ng/ml。
    1.3
    樣品
       
    實(shí)驗(yàn)所用樣品包括玉米、小麥等,取代表樣品5kg,粉碎,充分混合均勻,四分法縮至500g。因霉菌毒素分布不均勻,充分混合非常重要,必要時(shí)取樣量加大(有地方建議取15kg)。
    1.4
    樣品的提取和凈化
       
    使用粉碎機(jī)將樣品研細(xì),稱取25g研細(xì)樣品置于250ml的燒瓶或攪拌瓶中。加入100ml乙腈-水(體積比8416)溶液。在旋轉(zhuǎn)震蕩器上震蕩1h。用漏斗、定性濾紙將其過(guò)濾到樣品瓶中。轉(zhuǎn)移8ml樣品提取液通過(guò)PuriToxSR160真 菌毒素多功能凈化柱,推出大約4ml的凈化液(具體過(guò)程見圖1),轉(zhuǎn)移2ml已凈化的提取液至潔凈的棕色瓶。在水浴60條件下用氮?dú)獯蹈伞?/span>
     
    1.5
    柱前衍生及液相色譜條件
       
    向剩余物中加入200μl正己烷、100μl三氟乙酸,立即旋緊蓋子。渦旋30s,在40烘箱中衍生15min,室溫下氮?dú)獯蹈苫旌衔?,?/span>200μl-乙腈(體積比8515)溶解殘余物并渦旋30s,將其轉(zhuǎn)移到1.5ml的離心試管中以10 000r/min的速度離心5min,把已經(jīng)制備凈化好的150μl樣品液轉(zhuǎn)移到HPLC樣品瓶,進(jìn)樣25μl。液相色譜條件見表1
     2
    結(jié)果與討論
    2.1 4
    種黃曲霉毒素的分離情況
       
    50μl黃曲霉毒素混標(biāo)工作溶液濃度為B1、G1 200ng/ml;G2、B2 50ng/ml)于棕色瓶?jī)?nèi),吹干,衍生,流動(dòng)相定容,經(jīng)液相色譜分離得出的標(biāo)準(zhǔn)色譜分離見圖2。黃曲霉毒素G1、B1的濃度為50ng/mlG2、B2的濃度為12.5ng/ml。
     2.2
    標(biāo)準(zhǔn)曲線及回歸方程
       
    按實(shí)驗(yàn)方法進(jìn)行測(cè)定,4種黃曲霉毒素的標(biāo)準(zhǔn)曲線、回歸方程及檢出限(按3倍信噪比計(jì)算)的測(cè)定結(jié)果見圖3和表2
     2.3
    樣品的加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn)
       
    取玉米樣品一份,分別做兩個(gè)濃度的加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn)。具體做法是:取8ml黃曲霉素空白樣的提取液,分別加10μl 25μl黃曲霉素混合標(biāo)準(zhǔn)液(1 000ng/ml黃曲霉素B1、G1以及250ng/ml黃曲霉素B2G2)作為加標(biāo)。經(jīng)過(guò)和樣品一樣的處理,得出其zui后的理論濃度見下式。
       
    B1、G1濃度:(0.010ml×1 000ng/ml)/8ml×(2ml/0.2ml)=12.5ng/ml;
    (0.025ml×1 000ng/ml
    /8ml×(2ml/0.2ml)=31.25ng/ml
       
    B2、G2濃渡:
    (0.010ml×250ng/ml)/8ml×(2ml/0.2ml)=3.125ng/ml
    ;
    0.025ml×250ng/ml/8ml×(2ml/0.2ml)=7.812 5ng/ml
     2.4
    精密度實(shí)驗(yàn)
       
    按實(shí)驗(yàn)方法進(jìn)行樣品處理,對(duì)同一樣品連續(xù)測(cè)定5次。
     2.5
    樣品調(diào)查
       
    從市面上抽取10份玉米樣品,按此實(shí)驗(yàn)方法進(jìn)行處理,結(jié)果為未檢出黃曲霉毒素。此方法簡(jiǎn)便易行、快速準(zhǔn)確、靈敏度高、檢測(cè)限低,適合大批量檢測(cè),值得推廣。
     

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